转录是基因表达的核心环节,其动态过程(如RNA聚合酶的结合、启动子解旋、增强子激活)与细胞命运决定、疾病发生密切相关。传统研究方法(如ChIP-seq、GRO-seq)虽能揭示转录相关蛋白结合或新生RNA水平,但存在细胞起始量要求高(需数百万细胞)、无法直接反映DNA单链状态(转录泡形成的关键标志)等局限。例如,增强子作为调控基因表达的顺式元件,其转录活性与DNA单链结构的关联一直难以在全基因组水平解析。
芝加哥大学何川团队开发的Kethoxal辅助单链DNA测序技术(KAS-seq),为这一领域带来了突破性解决方案。相关成果发表于《Nature Methods》(2020年),揭示了转录调控与增强子功能的全新机制。
1. 单链DNA标记的化学核心
KAS-seq基于叠氮基乙氧二羟丁酮(N₃-kethoxal)的独特化学性质:
1) 高特异性:仅与单链DNA(ssDNA)中的鸟嘌呤(G)反应,双链DNA因碱基配对阻断结合,避免背景干扰。
2) 快速高效:5分钟内即可在活细胞或小鼠组织中完成标记,保留瞬时转录事件的原始状态。
在DAMM-seq诞生前,RNA甲基化检测面临两大核心难题:

2. 全基因组捕获与分析流程
1) 标记与富集:N₃-kethoxal标记后,通过生物素-链霉亲和素磁珠富集ssDNA片段,结合高通量测序实现全基因组单链区域定位。
2) 低起始量兼容:仅需1000个细胞或小鼠组织样本,即可完成测序,适用于稀有细胞(如干细胞、临床样本)研究。


1. 转录泡的全基因组图谱
KAS-seq首次在全基因组范围内可视化转录泡(转录活跃区域的ssDNA结构),发现:
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启动子与终止子的特异性信号:在转录起始位点(TSS)和终止位点(TES)附近呈现强单链信号,与Pol II结合及转录延伸高度相关。
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动态响应药物干预:用DRB(Pol II释放抑制剂)处理后,TSS附近单链信号增强,基因体区域信号减弱,印证转录泡形成与Pol II活性的直接关联。
2. 增强子的单链状态与功能激活
约25%的增强子呈现单链结构(称为SSEs,单链DNA增强子),其特征包括:
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高转录活性:94%的超级增强子属于SSEs,且与H3K27ac(活性染色质标记)高度共定位。
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独特序列基序与转录因子结合:SSEs富集特定转录因子(如Brd4、CTCF)结合基序,提示其通过招募调控蛋白增强靶基因表达。
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三维基因组互作:SSEs与启动子的长程互作(通过CTCF/Pol II介导)显著多于双链增强子,揭示单链结构对增强子-启动子通讯的重要性。
3. 转录调控的动态响应机制
利用1,6-己二醇破坏蛋白质凝聚体(转录激活相关结构)后,KAS-seq发现:
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Pol II快速释放现象:5分钟内,Pol II从启动子向基因体区域移动,伴随TSS附近ssDNA信号减弱,提示蛋白质凝聚体对Pol II的锚定作用。
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磷酸化依赖性调控:Pol II的CTD丝氨酸5磷酸化水平(S5P)与释放效率正相关,揭示转录起始-延伸转换的分子机制。
1. 基础生物学研究
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解析转录异质性:在干细胞分化、肿瘤细胞转录重编程中,定位动态ssDNA区域,揭示细胞命运决定的关键节点。
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非编码RNA与染色质互作:结合eRNA转录与ssDNA结构,阐明增强子RNA(eRNA)的作用机制。
2. 疾病机制与生物标志物发现
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癌症转录异常:检测癌基因启动子的ssDNA过度暴露,筛选潜在转录靶向药物(如Pol II抑制剂)。
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罕见病样本分析:利用低起始量优势,从临床穿刺样本中解析致病基因的转录动态。
3. 技术联用与拓展
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多组学整合:结合ATAC-seq(染色质可及性)、Hi-C(三维基因组),构建转录调控的多维图谱。
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实时动态追踪:开发荧光标记的kethoxal类似物,实现活细胞内ssDNA结构的实时成像。
KAS-seq通过化学标记与高通量测序的巧妙结合,首次实现了低样本量、高灵敏度、全基因组的ssDNA检测,为转录动态与增强子功能研究提供了“金标准”。其技术创新性不仅体现在方法学突破,更在于揭示了转录调控中“结构-功能”的深层关联——单链DNA不仅是转录的副产物,更是基因表达调控的主动参与者。
随着技术的进一步优化(如空间分辨率提升、多物种兼容性扩展),KAS-seq有望在发育生物学、肿瘤精准医疗等领域引发新的研究热潮,为解码生命调控网络提供强大工具。
KAS-seq
KAS-seq(N3-乙氧基乙醛辅助单链DNA测序)服务是基于创新单链DNA(ssDNA)标记技术的全基因组分析解决方案。该技术通过特异性小分子N3-kethoxal高效标记细胞内动态形成的ssDNA区域,精准捕获转录过程中RNA聚合酶诱导的转录泡及增强子活性区域,实现全基因组范围内转录动态的高分辨率解析。

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[1] Wu,T.,Lyu,R.,You,Q.,&He,C.(2020).Kethoxal-assisted single-stranded DNA sequencing captures global transcription dynamics and enhancer activity in situ. *Nature Methods, 17*(5), 515-523.
