DC细胞作为免疫前线的指挥官，是目前所知的机体内功能最强的抗原提呈细胞。它起源于骨髓并居住在外周和淋巴组织中的淋巴样或髓系细胞。体外培养的DC细胞来源可以是骨髓、外周血的单核细胞诱导生成；或骨髓、外周血来源的CD34+HSC骨髓多能造血干细胞诱导生成；或从血液、组织等样本中直接分离。其中，外周血中CD14+单核细胞获取较为便捷，诱导生成Mo-DC细胞是经典的方法之一[1]。
DC细胞发育图谱[2]
DC细胞分选是相关研究中的关键环节，在磁珠分选实验中有很多不可忽视的关键点，直接影响着分选实验的得率和纯度。本文将详细解析美天旎磁珠分选实验前后的关键注意事项，并深入解读两款热门DC细胞磁珠分选实验流程（CD14、Pan Monocyte），涉及阳性分选，阴性分选策略。助您一站式掌握DC细胞磁珠分选核心技术！
· 关于磁珠分选实验，您务必要知道的关键点
（耐心看完，后附分选实操案例）
分选前准备
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确认磁珠：根据您的实验种属、样本来源、目的细胞marker选择适配的磁珠。
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确认分选策略： 根据您实验的指标类型以及后续需求选择对应的分选策略。
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确认磁珠：根据您的实验种属、样本来源、目的细胞marker选择适配的磁珠。
阳性分选：
目的细胞被磁性标记后，作为阳性标记组分直接分选出来。该方法常用于以下情况：
1. 分选表达单一表面标志物的细胞分选（如CD3+,CD4+,CD8+细胞）
2. 稀有细胞的分选 (如循环肿瘤细胞CTC、肿瘤浸润淋巴细胞TIL)
3. 表达较弱的表面标志物细胞分选（如CD133+细胞）
4. 去除特定细胞群分选（如TCRαβ+T去除、CD45RA+细胞去除）
阴性分选/去除分选：
非目的细胞磁性标记后从细胞混合物中去除，即未磁性标记的细胞为目的细胞。该方法常用于以下情况：
1. 去除特定非目的细胞群
2. 缺乏目的细胞特异性表面标志物的分选（如某些肿瘤细胞、神经元）
3. 磁珠分选后需进一步通过阳性选择分选细胞亚群（CD4+CD25+Treg）
4. 分选后的细胞表面不可带有任何磁珠标记
顺序分选：
联合使用两种分选策略，例如先阴选后阳选，或先使用可剪切的REAlease磁珠后进行阳性分选。该方法常用于以下情况：
1. 同步分离两种特定细胞亚群：首先通过阴性分选去除共同杂质细胞，随后利用阳性分选将剩余的目标细胞亚群分开
2. 目标抗原在非目的细胞上存在交叉表达，导致直接阳性分选纯度不足
3. 要分选极稀有的细胞，通过预富集步骤提高目的细胞的纯度和得率
全血分选：
从血液样本中直接分选目的细胞，无需裂解红细胞，无需密度梯度离心。该方法常用于以下情况：
1. 简化实验流程，省去离心等操作步骤，短时间内获得高回收率，高活性的目的细胞
2. 针对血样样本量较少，可最大程度上节省样本的损失
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确认分选柱：对于不同类型的分选柱选择，关键是不要超过推荐的细胞量，否则会使柱子过载，导致分选效果不佳。可根据您的细胞总数和目标细胞数、分选策略选择对应的分选柱，可参考下图。对于具体使用的磁珠，参考每个磁珠说明书附的数据表，进行分选柱的选择。
注：全血分选磁珠需搭配全血分选柱套装（# 130-093-545），其中包含全血分选柱和全血分选缓冲液。
相关产品货号：
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确认分选平台：根据您的分选柱，选择适配的分选平台。
相关产品货号：
注：全血分选柱可搭配Midi MACS分选器（#130-042-302）或 QuadroMACS Separator分选器 (# 130-090-976)
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准备分选缓冲液：
方案1：将MACS BSA Stock Solution（#130‑091‑376）和autoMACS Rinsing Solution（#130‑091‑222）按照1:20配置，作为分选buffer；分选缓冲液需放置4°预冷。
方案2：如您的细胞对于叠氮化钠成分不敏感，可直接选择autoMACS Running Buffer（#130-091-221）进行分选。该buffer内含有少量的叠氮化钠，对某些敏感细胞，例如神经细胞造成影响。
方案3：含0.5%BSA(abs9156-50g)、2mM EDTA(abs9133)的PBS(abs962)，配置后调整PH至7.2，需去除气泡，气泡可能导致分选柱堵塞。配好的buffer可先静置，也可使用真空抽滤、超声消除气泡。
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细胞计数和活性检测：
分选前需要检测单细胞样本的细胞量及细胞活率，通过细胞量计算您的磁珠添加量；建议起始单细胞活率达到85%以上再进行磁珠分选，会得到较为理想的实验结果。
您可以选择对应产品提升样本的初始活性：
细胞筛网：利用细胞筛网将粗提的单细胞悬液过筛，过滤组织团块，可根据您的细胞大小选择合适孔径的筛网（MACS® SmartStrainers70μm#130-098-462或70um细胞筛网#abs7232）
碎片去除试剂：利用密度梯度离心的原理去除碎片（Debris Removal Solution#130-109-398或细胞分离液#abs9102 ）、
死细胞去除磁珠：磁珠标记死细胞表面的磷脂酰丝氨酸，通过高强度磁场，将死细胞去除（ Dead Cell Removal Kit #130-090-101）
裂红试剂：利用细胞内外存在盐离子浓度差而导致细胞膜胀破的原理来裂解无核红细胞。（Red Blood Cell Lysis Solution (10×)#130-094-183或红细胞裂解液（1×）#abs9101）
分选过程中
一、
磁珠篇
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美天旎磁珠为胶体溶液，不会沉淀，实验前不用摇晃即可直接使用。
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磁珠说明书中推荐的磁珠标记的体积适用于1×107的细胞。当您的总细胞量少于107细胞，需按照说明使用相同的体积。当超过107细胞数，将所有试剂体积和总体积按照相应比例增加。
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磁珠孵育温度根据说明书通常为2-8℃，建议在冰箱中避光孵育，直接放置于冰上会使磁珠结合效率变差。提高温度或延长孵育时间均可能导致非特异性磁性标记。
如磁珠说明书中推荐孵育时间为（+19-25℃），则磁珠应在室温条件下避光孵育。
二、
分选篇
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分选柱在加样前需使用缓冲液润洗，润洗分选柱的缓冲液请事先回温至操作环境温度，防止预冷的缓冲液润洗室温分选柱，导致分选柱中形成小气泡，使分选效果不佳。
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整个分选过程要尽量快速操作，保持细胞处于低温，分选过程中使用的分选缓冲液需预冷，可防止抗体包裹在细胞表面以及非特异性的磁性标记。
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每一次向分选柱中加液均需等到分选柱中的液体流空，最后一滴在分选柱中不滴出时，再进行下一步加液。
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收集分选柱中磁珠标记的细胞液，需要将分选柱从磁场中拿下，放至收集管上，向分选柱加入缓冲液后立即进行栓塞按压；分选柱栓塞只能按压一次，请勿反复操作。
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分选柱为一次性耗材，请勿重复使用。
分选结束后
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利用流式检测目的细胞占比及分选后细胞活性，计算出分选纯度和分选得率，您可参考以下公式进行计算：
· 分选纯度=分选后目的细胞总数量/分选后所得所有细胞总数量
· 分选得率=分选后目的细胞总数量/分选前目的细胞总数量
注意：分选前目的细胞总数量=标记后未上柱子前的细胞悬液*目的细胞占比
想要了解更多磁珠分选介绍
为您详细解读2款热门DC细胞分选实例，干货来袭，照搬流程直接做实验！
阳性分选： 130-050-201 CD14 MicroBeads, human（对应冻干磁珠可选130-097-052）
阴性分选：130-096-537 Pan Monocyte Isolation Kit, human
阳性分选： CD14 MicroBeads, human（#130-050-201）
磁性分选耗材
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MS分选柱（#130-042-201）或LS分选柱（#130-042-401）
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MS分选柱对应的Mini MACS分选器（#130-042-102）或OctoMACS分选器（#130-042-109）；
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LS分选柱对应的Midi MACS分选器（#130-042-302）或QuadroMACS分选器（#130-090-976）；
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MACS MultiStand（#130-042-303）
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MACS BSA Stock Solution（#130‑091‑376）和autoMACS Rinsing Solution（#130‑091‑222）1:20配置
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Pre-Separation Filters 30μm预分离滤器（#130-041-407）（可选，磁珠标记前去除细胞团，防止堵塞分选柱）
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如需进行去除分选，需选择LD分选柱，搭配Midi MACS分选器
实验步骤
一、
磁珠标记CD14细胞
1.细胞计数；
2.细胞悬液300×g离心10分钟，弃上清；
3.细胞重悬，每1×107细胞添加80μL分选缓冲液；
4.每1×107细胞添加20 μLCD14 MicroBeads磁珠；
5.混匀，于2-8℃孵育15min；
6.每1×10⁷个细胞加入1-2 mL分选缓冲液洗涤细胞，300×g离心10分钟，弃上清
7.添加分选缓冲液，调整溶液体积至500 μL（注：500 μL体积最大重悬至1×108细胞，对于更多的细胞数量，需要相应提高缓冲液体积）
二、
磁珠分选CD14细胞
1.将分选柱放入对应的MACS分选器的磁场中，如需详细分选柱信息请查看MACS分选柱载量数据表；
2.用适量缓冲液润洗分选柱，等到分选柱中液体排空后，再进行下一步骤（MS分选柱使用500 μL分选缓冲液润洗；LS分选柱使用3 mL分选缓冲液润洗）；
3.将制备好的细胞悬液加入分选柱中，收集的流穿细胞液为未被标记的细胞；
4.分别用分选缓冲液清洗柱子三次（MS分选柱使用500 μL分选缓冲液清洗3次；LS分选柱使用3 mL分选缓冲液清洗3次），收集未被标记的非CD14细胞；
5.从分选器中取出分选柱，将其放到合适的收集管上；
6.吸取适量的缓冲液（MS：1 mL；LS：5 mL），加到分选柱中，立即将栓塞推入分选柱中，冲洗出磁珠标记的细胞，即为CD14细胞；
Pan Monocyte细胞分选：
Pan Monocyte Isolation Kit, human（#130-096-537）
磁性分选耗材
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MS分选柱（#130-042-201）或LS分选柱（#130-042-401）
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MS分选柱对应的Mini MACS分选器（#130-042-102）或OctoMACS分选器（#130-042-109）；
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LS分选柱对应的Midi MACS分选器（#130-042-302）或QuadroMACS分选器（#130-090-976）；
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MACS MultiStand（#130-042-303）
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MACS BSA Stock Solution（#130‑091‑376）和autoMACS Rinsing Solution（#130‑091‑222）1:20配置
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Pre-Separation Filters 30μm预分离滤器（#130-041-407）（可选，磁珠标记前去除细胞团，防止堵塞分选柱）
实验步骤
一、
磁珠标记非单核细胞
1.细胞计数；
2.细胞悬液300×g离心10分钟，弃上清；
3.细胞重悬，每1×107细胞添加30μL分选缓冲液；
4.每1×107细胞添加10 μLFcR Blocking试剂；
5.每1×107细胞添加10 μL Biotin-Antibody Cocktail抗体；
6.混匀，于2-8℃孵育5min；
7.每1×107细胞添加30 μL分选缓冲液；
8.每1×107细胞添加20 μL Anti-Biotin MicroBeads磁珠；
9.混匀，于2-8℃孵育10min；
10.添加分选缓冲液，调整溶液体积至500 μL（注：500 μL体积最大重悬至1×108细胞，对于更多的细胞数量，需要相应提高缓冲液体积）
二、
磁珠去除非单核细胞
1. 将对应分选柱放入分选器的磁场中，如需详细分选柱信息请查看MACS分选柱载量数据表；
2. 用适量缓冲液润洗分选柱（MS分选柱使用500 μL分选缓冲液润洗；LS分选柱使用3 mL分选缓冲液润洗）；
3. 将制备好的细胞悬液加入到分选柱中，收集流出液，其中包含未标记的细胞，即富集的 单核细胞；
4. 用适量的缓冲液冲洗柱子三次（MS分选柱每次使用500 μL分选缓冲液冲洗3次，LS分选柱每次使用3mL分选缓冲液冲洗3次）。收集流过的未标记细胞，并与第3步中的流出液合并。
5. (可选）如需非单核细胞，可将分离器上的分选柱移除，并将其放置在合适的收集管中。向分选柱中加入适量的分选缓冲液（MS分选柱使用1mL分选缓冲液，LS分选柱使用5mL分选缓冲液）。立即通过将栓塞推入分选柱中，冲洗出磁性标记的非单核细胞保存备用。
以上就是两款热门DC细胞磁珠分选的实验流程！想了解更多DC细胞磁珠产品，小优为您总结了DC细胞分选磁珠产品合集：
Human DC细胞分选：
货号130-050-201 CD14 MicroBeads
货号130-096-537 Pan Monocyte lsolation Kit
货号130-090-879 StraightFrom Whole Blood CD14 MicroBeads
货号130-091-379 Blood Dendritic Cell lsolation Kit ll
货号130-100-777 Pan-DC Enrichment Kit
货号130-097-240 Diamond Plasmacytoid Dendritic Cell lsolation Kit ll
货号130-097-415 Plasmacytoid Dendritic Cell lsolation Kit ll
Mouse DC细胞分选：
货号130-125-835 CD11c MicroBeads Ultrapure
货号130-119-475 Pan DC MicroBeads
货号130-100-875 Pan Dendritic Cell lsolation Kit
货号130-111-744 Plasmacytoid Dendritic Cell lsolation Kit
货号130-091-965 Anti-mPDCA-1 MicroBeads
冻干磁珠有效期更长久，想要了解冻干磁珠产品可点击文章：你知道美天旎有效期2年的冻干型磁珠吗？}
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参考文献：
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